（一）实验原理

Southern印迹杂交技术包括两个主要过程：一是将待测定核酸分子通过一定的方法转移并结合到一定的固相支持物（硝酸纤维素膜或尼龙膜）上，即印迹（blotting）；二是固定于膜上的核酸同位素标记的探针在一定的温度和离子强度下退火，即分子杂交过程。该技术是1975年英国爱丁堡大学的E.M.Southern首创的，Southern印迹杂交故因此而得名。

早期的Southern印迹是将凝胶中的DNA变性后，经毛细管的虹吸作用，转移到硝酸纤维膜上。近年来印迹方法和固定支持滤膜都有了很大的改进，印迹方法如电转法、真空转移法；滤膜则发展了尼龙膜、化学活化膜（如APT、ABM纤维素膜）等。利用Southern印迹法可进行克隆基因的酶切、图谱分析、基因组中某一基因的定性及定量分析、基因突变分析及限制性片段长度多态性分析（RFLP）等。

（二）实验方法

以哺乳动物基因组DNA为例，介绍Southern印迹杂交的基本步骤。

1.待测核酸样品的制备

（1）制备待测DNA：基因组DNA从动物组织（或）细胞制备。

①采用适当的化学试剂裂解细胞，或者用组织匀浆器研磨破碎组织中的细胞；

②用蛋白酶和RNA酶消化大部分蛋白质和RNA；

③用有机试剂（酚/氯仿）抽提方法去除蛋白质。

（2）DNA限制酶消化：基因组DNA很长，需要将其切割成大小不同的片段之后才能用于杂交分析，通常用限制酶消化DNA。一般选择一种限制酶来切割DNA分子，但有时为了某些特殊的目的，分别用不同的限制酶消化基因组DNA。切割DNA的条件可根据不同目的设定，有时可采用部分和充分消化相结合的方法获得一些具有交叉顺序的DNA片段。消化DNA后，加入EDTA，65℃加热灭活限制酶，样品即可直接进行电泳分离，必要时可进行乙醇沉淀，浓缩DNA样品后再进行电泳分离。

2.琼脂糖凝胶电泳分离待测DNA样品

（1）基本原理：Southern印迹杂交是先将DNA样品（含不同大小的DNA片段）按片段长短进行分离，然后进行杂交。这样可确定杂交靶分子的大小。因此，制备DNA样品后需要进行电泳分离。

在恒定电压下，将DNA样品放在0.8％～1.0％琼脂糖凝胶中进行电泳，标准的琼脂糖凝胶电泳可分辨70～80000bp的DNA片段，故可对DNA片段进行分离。但需要用不同的胶浓度来分辨这个范围内的不同的DNA片段。原则是分辨大片段的DNA需要用浓度较低的胶，分辨小片段DNA则需要浓度较高的胶。

琼脂糖凝胶是由琼脂糖形成的网状物质，具有分子筛作用。在相应的电泳缓冲液中，DNA在电场的作用下由负极向正极泳动，分子越大，泳动速度越慢；反之，分子小则泳动速度快，而大小相同的分子则泳动速度相同。因此在恒定的电场下，经过一段时间的电泳后，DNA按分子大小在凝胶中形成许多条带，大小相同的分子处于同一条带。另外为了便于测定待测DNA分子量的大小，往往同时在样品邻近的泳道中加入已知分子量的DNA样品，即标准分子量DNA（DNA marker）进行电泳。DNA marker可以用放射性核素进行末端标记，通过这种方式，杂交后的标准分子量DNA也能显影出条带。

在制备凝胶和电泳过程中需要注意的几个问题是：1）尽可能在使用之前配制新鲜凝胶；2）如果使用的胶比较薄，铺胶后1h内使用；3）胶中不要含有EB，否则会引起非特异性背景；4）电泳结束后用1μg/mL的EB染色，然后用水脱色（如果胶里含的是RNA，则使用无RNA酶的水），以保证核酸的完整性。

（2）基本步骤

①制备琼脂糖凝胶，尽可能薄。DNA样品与上样缓冲液混匀，上样。

一般而言，对地高辛杂交系统，所需DNA样品的浓度较低，每道加2.5～5μg人类基因组DNA；如果基因组比人类DNA更复杂（如植物DNA）则上样量可达10μg；每道上质粒DNA＜1ng。

②分子质量标志物（DIG标记）上样。

③电泳，使DNA条带很好地分离。

④评价靶DNA的质量。在电泳结束后，0.25～0.50μg/mL EB染色15～30min，紫外灯下观察凝胶。

3.电泳凝胶预处理

（1）原理：DNA样品在制备和电泳过程中始终保持双链结构。为了有效地实现Southern印迹转移，对电泳凝胶做预处理十分必要。分子量超过10kb的较大的DNA片段与较短的小分子量DNA相比，需要更长的转移时间。所以为了使DNA片段在合理的时间内从凝胶中移动出来，必须将最长的DNA片段控制在2kb以下。DNA的大片段必须被打成缺口以缩短其长度。因此，通常是将电泳凝胶浸泡在0.25mol/L的HCl溶液中做短暂的脱嘌呤处理之后，移至碱性溶液中浸泡，使DNA变形并断裂形成较短的单链DNA片段，再用中性pH的缓冲液中和凝胶中的缓冲液。这样，DNA片段经过碱变性作用，亦会保持单链状态而易于同探针分子发生杂交作用。

（2）基本步骤

1）如果靶序列＞5kb，则需进行脱嘌呤处理：把凝胶浸在0.25mol/LHCl中，室温轻轻晃动，直到溴酚蓝从蓝变黄。

注意：处理人类基因组DNA不超过10min；处理植物基因组DNA不超过20min。然后把凝胶浸在灭菌双蒸水中。

2）如果靶序列＜5kb，则直接进行下面的步骤：把凝胶浸在变性液（0.5mol/LNaOH，1.5mol/LNaCl）中，室温2×15min，轻轻晃动。再把凝胶浸在灭菌双蒸水中，之后将凝胶浸在中和液中（0.5mol/L Tris-HCl，pH7.5，1.5mol/L NaCl），室温2×15min，最后放至20×SSC中平衡凝胶至少10min。

4.转膜　即将凝胶中的单链DNA片段转移到固相支持物上。而此过程最重要的是保持各DNA片段的相对位置不变。DNA是沿与凝胶平面垂直的方向移出并转移到膜上，因此，凝胶中的DNA片段在碱变性过程已经变性成单链并已断裂，转移后各个DNA片段在膜上的相对位置与在凝胶中的相对位置仍然一样，故而称为印迹（blotting）。

用于转膜的固相支持物有多种，包括硝酸纤维素膜（NC膜）、尼龙（Nylon）膜、化学活化膜和滤纸等，转膜时可根据不同需要选择不同的固相支持物用于杂交。其中常用的是NC膜和Nylon膜。

（1）细管虹吸印迹法：此法是利用浓盐酸转移缓冲液的推动作用将凝胶中的DNA转移到固相支持物上。容器中的转移缓冲液含有高浓度的NaCl和柠檬酸钠，上层吸水纸的虹吸作用使缓冲液通过滤纸桥、滤纸、凝胶、硝酸纤维素膜或尼龙膜向上运动，同时带动凝胶中的DNA片段垂直向上运动而滞留在膜上。

步骤：

①20×SSC浸湿一张whatman 3mm滤纸放在支撑平台上，此平台要比凝胶稍大，形成一个“桥”。

②凝胶反放在浸湿的whatman 3mm滤纸上，注意两者之间不能有气泡。

③照凝胶的大小剪一张尼龙膜。

④膜放在凝胶上。

⑤尼龙膜上放一张whatman 3mm滤纸、一叠吸水纸，上置一玻璃板，其上放一重约0.2～0.5kg的物品。

⑥20×SCC的转移缓冲液中充分转移18～24h，及时换掉浸湿的吸水纸。

⑦用以下方法把DNA固定在膜上：

紫外交联：把膜（DNA面朝上）放在用2×SCC浸湿的whatman 3mm滤纸上，把湿膜暴露在短波紫外光（254nm）下1～3min。在无菌双蒸水中浸润膜后在空气中晾干膜。

干燥：在2×SCC中短暂洗膜。120℃ 30min干烤固定或80℃ 2h干烤固定。

⑧如果不立即进行下一步杂交反应，则可把膜保存在两张whatman 3mm滤纸之间，放在密封袋中4℃保存。

（2）电转移法：此法是通过电泳作用将凝胶中的DNA转移到固相支持物上。其基本方法是将滤膜与凝胶贴在一起，并将凝胶与滤膜一起置于滤纸之间，固定于凝胶支持夹，将支持夹置于盛有转移电泳缓冲液的转移电泳槽中，凝胶平面与电场方向垂直，附有滤膜的一面朝向正极。在电场的作用下凝胶中的DNA片段向与凝胶平面垂直的方向泳动，从凝胶中溢出，滞留在滤膜上形成印迹。该法具有简单、快速、高效转移DNA的特点，尤其适用于用毛细管虹吸转移不理想的大片段DNA。一般只需2～3h，至多8h即可完成转移过程。但应用这种方法需注意：不能选用硝酸纤维素膜作为固相支持物；应用循环冷却水装置以保证转移缓冲液温度不会太高；转移缓冲液不能用高盐缓冲液，以免产生强电流破坏DNA。

具体步骤如下：

①将凝胶浸泡于1×TBE或TAE中。

②准备好电转移装置的凝胶支持夹，裁剪4张与凝胶大小相同的whatman 3mm滤纸和一张尼龙膜浸泡于1×TBE或TAE中。

③依次将凝胶、尼龙膜、滤纸和海绵垫叠放在凝胶支持夹中，各层之间不能有气泡滞留。

④将凝胶支持夹安放在充满1×TBE或TAE的电转仪中。

⑤尼龙膜一侧置正极，凝胶一侧置负极，300～600mA恒流，4～8h，循环水冷却或置冷室中。

⑥电转移完毕，尼龙膜用1×TBE或TAE漂洗，用干燥滤纸吸干，80℃真空烘烤2h或短波紫外照射固定备用。(www.daowen.com)

（3）真空转移法：此法原理与毛细管虹吸法相同，只是以滤膜在下，凝胶在上的方式将其放置在一个真空室上，利用真空作用将转膜缓冲液从上层容器中通过凝胶和滤膜抽到下层真空室中，同时带动核酸片段转移到置于凝胶下面的固相支持物上（尼龙膜或硝酸纤维素膜上）。

真空转移法的最大优点是迅速，可在转膜的同时进行DNA变性与中和，整个过程约需30～60min。但在操作中应注意两个问题，一是真空压力不能太大，若压力过大，凝胶被压缩，转移效率会降低；二是真空转移液要密封严，防止漏气影响压力的产生。

5.探针标记　用于Southern印迹杂交的探针可以是纯化的DNA片段或寡核苷酸片段。探针可以用放射性物质标记或用地高辛标记，放射性标记灵敏度高，效果好；地高辛标记没有半衰期，安全性好。人工合成的短寡核苷酸可以用T4多聚核苷酸激酶进行末端标记。探针标记的方法有随机引物法、切口平移法和末端标记法。

6.预杂交（prehybridization）　将固定于膜上的DNA片段与探针进行杂交之前，必须先进行一个预杂交的过程。因为能结合DNA片段的膜同样能够结合探针DNA，在进行杂交前，必须将膜上所有能与DNA结合的位点全部封闭，这就是预杂交的目的。预杂交是将转印后的滤膜置于一个浸泡在水浴摇床的封闭塑料袋中进行，袋中装有预杂交液，使预杂交液不断在膜上流动。预杂交液实际上就是不含探针的杂交液，可以自制或从公司购买，不同的杂交液配方相差较大，杂交温度也不同。但其中主要含有鲑鱼精子DNA（该DNA与哺乳动物的同源性极低，不会与DNA探针杂交）、牛血清等，这些大分子可以封闭膜上所有非特异性吸附位点。

（1）具体步骤

①配制预杂交液

6×SSC

5×Denhardt’s试剂

0.5％SDS

50％（v/v）甲酰胺

ddH2O

100 ug/mL鲑鱼精子DNA变性后加入

②把预杂交液放在灭菌的塑料瓶中，在水浴中预热至杂交温度。

③将表面带有目的DNA的硝酸纤维素滤膜放入一个稍宽于滤膜的塑料袋，用5～10mL 2×SSC浸湿滤膜。

④将鲑鱼精子DNA置沸水浴中10min，迅速置冰上冷却1～2min，使DNA变性。

⑤从塑料袋中除净2×SSC，加入预杂交液，每平方滤膜加0.2mL。

⑥加入变性的鲑鱼精子DNA置终浓度200μg/mL。

⑦尽可能除净袋中的空气，用热封口器封住袋口，上下颠倒数次以使其混匀，置于42℃水浴中温浴4h。

（2）注意事项

①每平方硝酸纤维素膜需预杂交液0.2mL。

②预杂交液制备时可用或不用poly（A）RNA。

③当使用32P标记的cDNA作探针时，可以在预杂交液或杂交液中加入poly（A）RNA以避免探针同真核生物DNA中普遍存在的富含胸腺嘧啶的序列结合。

④按照探针、靶基因和杂交液的特性确定合适的杂交温度。如果使用标准杂交液，靶序列DNA GC含量为40％，则杂交温度为42℃。

7.Southern杂交

（1）原理：转印后的滤膜在预杂交液中温浴4～6h，即可加入标记的探针DNA（探针DNA预先经加热变性成为单链DAN分子），即可进行杂交反应。杂交是在相对高离子强度的缓冲盐溶液中进行。杂交过夜，然后在较高温度下用盐溶液洗膜。离子强度越低，温度越高，杂交的严格程度越高，也就是说，只有探针和待测顺序之间有非常高的同源性时，才能在低盐高温的杂交条件下结合。

（2）步骤

①将标记的DNA探针置沸水浴10min，迅速置冰上冷却1～2min，使DNA变性。

②从水浴中取出含有滤膜和预杂交液的塑料袋，剪开一角，将变性的DNA探针加到预杂交液中。

③尽可能除去袋中的空气，封住袋口，滞留在袋中的气泡要尽可能地少，为避免同位素污染水浴，将封好的杂交袋再封入另一个未污染的塑料袋内。

④置42℃水浴温浴过夜（至少18h）。

8.洗膜　取出NC膜，在2×SSC溶液中漂洗5min，然后按照下列条件洗膜：

2×SSC/0.1％SDS，42℃，10min

1S×SCC/0.1％SDS，42℃，10min

0.5S×SCC/0.1％SDS，42℃，10min

0.2×SSC/0.1％SDS，56℃，10min

0.1×SSC/0.1％SDS，56℃，10min

采用核素标记的探针或发光剂标记的探针进行杂交还需注意的关键一步就是洗膜。在洗膜过程中，要不断振荡，不断用放射性检测仪探测膜上的放射强度。当放射强度指示数值较环境背景高1～2倍时，即停止洗膜。洗完的膜浸入2×SSC中2min，取出膜，用滤纸吸干膜表面的水分，并用保鲜膜包裹。注意保鲜膜与NC膜之间不能有气泡。

9.放射性自显影检测

①将滤膜正面向上，放入暗盒中（加双侧增感屏）。

②在暗室内，将2张X光底片放入曝光暗盒，并用透明胶带固定，合上暗盒。

③将暗盒置-70℃低温冰箱中使滤膜对X光底片曝光（根据信号强弱决定曝光时间，一般为1～3天）。

④从冰箱中取出暗盒，置室温1～2h，使其温度上升至室温，然后冲洗X光底片（洗片时先洗一张，若感光偏弱，则多加两天曝光时间，再洗第二张片子）。

（三）实验结果

在膜上，阳性反应呈带状。

（四）实验中应注意以下问题

1.转膜必须充分，要保证DNA已转到膜上。

2.杂交条件及漂洗是保证阳性结果和背景反差对比好的关键。

3.洗膜不充分会导致背景太深，洗膜过度又可能导致假阴性。

4.若用到有毒物质，必须注意环保及安全。