理论教育 植物基因组SSR多态性分析:实验二十

植物基因组SSR多态性分析:实验二十

时间:2023-11-01 理论教育 版权反馈
【摘要】:实验目的1.掌握利用微卫星DNA研究DNA多态性的基本方法。SSR标记技术因具有多态性高、共显性遗传和对DNA质量要求不高等特点而被广泛应用于遗传多样性分析、基因定位、构建遗传连锁图谱、作物品种鉴别等各个领域。本实验用特定的两对SSR引物对这两个品种的SSR多态性进行分析,比较这两个品种之间的基因多态性。

植物基因组SSR多态性分析:实验二十

实验目的

1.掌握利用微卫星DNA研究DNA多态性的基本方法。

2.掌握聚丙烯酰胺凝胶电泳的方法。

实验原理

简单重复序列(simple sequence repeat,SSR)又称微卫星DNA,是一类由2~6个碱基组成的串联重复DNA序列。SSR标记技术是根据SSR两侧的保守序列设计引物进行PCR扩增,由于不同品种SSR基序的重复次数不同,导致PCR扩增条带差异性,即简单重复序列长度多态性(simple sequence length polymorphism,SSLP),SSLP很容易通过PCR快速扩增和高分辨率的琼脂糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶电泳检测到。

SSR标记技术因具有多态性高、共显性遗传和对DNA质量要求不高等特点而被广泛应用于遗传多样性分析、基因定位、构建遗传连锁图谱、作物品种鉴别等各个领域。

亚洲栽培稻(Oryzasativa L.)可以分为两个主要的亚种,籼稻(Oryzasativa subsp.indica)和粳稻(Oryzasativa subsp.japonica)。这两个栽培亚种的种内表型变异非常显著,包括生长、发育和环境适应性。本实验用特定的两对SSR引物对这两个品种的SSR多态性进行分析,比较这两个品种之间的基因多态性。

实验用品

1.材料

籼稻(Oryzasativa subsp.indica)和粳稻(Oryzasativa subsp.japonica)。

2.试剂

(1)裂解液:100mmol/LTris-HCl(pH8.0),5mmol/LEDTA,500mmol/LNaCl,1.25%SDS,1%巯基乙醇,1%PVP(聚乙烯吡咯烷酮)。

(2)1mol/LTris-HCl(pH8.0):将121.1g的Tris碱溶解于约800mL蒸馏水中,再根据所要求的pH(25℃)加一定量的浓盐酸,调pH8.0,定容至1 000mL。

(3)苯酚-氯仿-异戊醇(25∶24∶1)。

(4)3mol/LNaAc(用冰醋酸调pH至5.2)。

(5)TE缓冲液:取1mL的1mol/LTris-HCl(pH8.0),与0.2mL的0.5mol/LEDTA(pH8.0)溶液混合后,用去离子水定容至100mL,灭菌,室温保存。

(6)异丙醇、氯仿、液氮、冰乙酸。

(7)5mg/mLRNase:用水溶解后煮沸10~15min,于-20℃贮存。

(8)10×TBE:Tris 108g,硼酸55g,EDTA 7.44g,ddH2O 定容至1 000mL。

(9)丙烯酰胺(Acr)母液:丙烯酰胺62.5g,N,N’-甲叉双丙烯酰胺(Bis)3.25g,尿素(Urea)125g,10×TBE 100mL,定容到1 000mL。

(10)聚丙烯酰胺凝胶电泳所需胶

①封底胶:琼脂糖1.0g,加入2×TBE至100mL中,在沸水浴或微波炉中加热,使之彻底溶化,配制成1%的琼脂糖溶液。

②变性胶(6%聚丙烯酰胺凝胶,120mL):Urea 14.4g,ddH2O 67.5mL,10×TBE 12mL,40%Acr 18mL,混匀后溶解。

注胶前加入:10%过硫酸铵1.4mL,四甲基乙烯二胺(TEMED)60μL。

(11)40×染色贮备液:硝酸银4g,ddH2O定容至100mL,使用前取10mL稀释成400mL,使用浓度为0.1%。

(12)20×显影贮备液:氢氧化钠150g,四硼酸钠1.4g,ddH2O定容至500mL。

工作液:取显影贮备液20mL,甲醛1.6mL,ddH2O定容至400mL。

(13)琼脂糖凝胶电泳试剂

①0.5×TBE电极缓冲液:使用时稀释10×TBE缓冲液至0.5×TBE。

②10mg/mL溴化乙锭(EB)贮备液。

③6×上样缓冲液:0.25%溴酚蓝,0.25%二甲苯青FF,40%(W/V)蔗糖水溶液。

(14)SSR引物:RM1812,RM8200。

3.器具

高速冷冻离心机、恒温培养箱、恒温振荡摇床、高压灭菌锅、恒温水浴锅、核酸蛋白分析仪、紫外分光光度计、制冰机、电泳仪、凝胶成像系统、紫外观测仪、冰箱、电子天平、液氮罐、混溶器、微波炉、移液枪、pH计、冰盒、移液枪、离心管(5mL)、研钵、制胶板、制胶槽、电泳槽、点样板、三角瓶等。

实验操作程序

1.水稻基因组DNA提取

(1)取籼稻和粳稻幼叶各0.5~1.0g置于预冷的研钵中,加液氮研磨成粉末状。

(2)再加入2mL裂解液继续研磨成匀浆,转入5mL离心管中,于60℃水浴中30min。

(3)12 000r/min离心5min,取上清液加入等体积的苯酚-氯仿-异戊醇,上下颠倒几次。

(4)12 000r/min离心5min,取上清液加等体积氯仿,上下颠倒几次。

(5)12 000r/min离心5min,取上清液加入1/9体积的3mol/LNaAc,混匀。

(6)加入等体积预冷异丙醇,上下颠倒几次。

(7)再12 000r/min离心6min,弃去上清液。(www.daowen.com)

(8)用75%乙醇浸洗沉淀两次,每次各20s,弃去乙醇。

(9)乙醇挥发后用50μLTE缓冲液溶解沉淀,-20℃保存备用。

2.琼脂糖凝胶电泳检测

(1)0.8%琼脂糖凝胶配置

称取0.8g琼脂糖,置于干净的三角瓶中,加入100mL0.5×TBE缓冲液,在沸水浴或微波炉中加热,使之彻底溶化后,加入5μLEB(使之终浓度0.5μg/mL)混匀,配制成0.8%的琼脂糖溶液。

(2)凝胶板准备

将上述琼脂糖溶液倒入凝胶板模具,静置,待其彻底凝固后拔出样品梳。

(3)加样

将凝胶板放置于含1×TBE的电泳槽中,缓冲液要没过凝胶表面。取DNA样品,按体积(上样缓冲液∶DNA样品=1∶5)比例加入上样缓冲液,混合均匀后小心地加入凝胶板的加样孔中。按同样方法在附近加样孔中加入DNAmarker,作为参照。

(4)电泳与观察

以5 V/cm电压开始电泳,当指示剂泳到一定距离后,停止电泳,取出凝胶板,于凝胶成像系统中观察并拍照记录。

3.PCR检测

根据上一步电泳检测的结果,结合PCR试剂盒使用说明书,设定PCR反应体系。提前预热PCR仪,设置反应参数。

(1)PCR 10μL反应体系如下:

10×PCR buffer            1μL

dNTPs mixture(2.5mmol/L)     1μL

引物(pf和pr)          各0.5μL

Taq DNA聚合酶(5U)      0.25μL

模板DNA             0.5μL

ddH2O             加至10μL

(2)PCR反应参数如下:

4.聚丙烯酰胺凝胶电泳检测

(1)清洗电泳槽、玻璃板、齿梳等,安装好电泳槽,底部用1%琼脂糖封底胶封好,待琼脂凝固后开始灌胶。

(2)配好6%聚丙烯酰胺凝胶即变性胶,混匀的凝胶液小心地倒入凝胶模具内,防止出现气泡。灌胶口插入齿梳,约30min后胶凝固,加入电极缓冲液。

(3)预电泳15min后,在10μL扩增产物中加入2μL6×上样缓冲液混匀,点样,以2~10 V/cm电压电泳,电泳时间足够长,使片断足以分开,待指示剂到适宜位置时停止电泳,取出凝胶板。

(4)电泳结束将凝胶板放入10%的冰乙酸中脱色,置于摇床缓慢匀速轻摇,约30min,至凝胶指示剂无色。换用蒸馏水漂洗2次,每次1~2min。

(5)凝胶板经漂洗后放入0.1%染色液中,轻摇20~30min。再换用蒸馏水漂洗2次,每次1~2min,然后放入预冷的显影液中,轻摇5~10min,至DNA条带出现。

(6)将显出DNA条带的凝胶板用蒸馏水漂洗几次,水中保存,观察统计并拍照。

预期实验结果

找到2个SSR标记在籼、粳水稻品种中表现出的不同带型。

要点及注意事项

1.掌握水稻DNA及RNA提取方法。

2.聚丙烯酰胺凝胶电泳检测中,丙烯酰胺和交联剂N,N’-亚甲基双丙烯酰胺均为神经毒剂,对皮肤有刺激作用,操作时应戴手套口罩,纯化应在通风橱中进行。勿用手接触灌胶面的玻璃,以防凝胶板和玻璃板剥离,产生气泡和滑胶,或者剥胶时凝胶板易断裂,故所用器材均应严格清洗。

作业与思考题

1.了解各种分子标记。

2.掌握分子标记分析动植物多态性的方法及原理。

参考文献

1.张利达.植物基因相关SSR序列调控及位点多态性研究[D].上海上海交通大学.2010.

2.唐荣华,张君诚,吴为人.SSR分子标记的开发技术研究进展[J].西南农业学报.2002,15(4),106-109.

3.陈仲中,汪旭升.基于水稻基因组序列SSR的多态性分析[J].中国水稻科学,2005,19(4):303-307.

(李晓峰)

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